1.实验原理
典型的生长曲线即可分为潜伏期、指数生长期、平顶期及退化衰老四个部分，其中的三个不同生长时期（潜伏期、指数生长期和平顶期）是每个细胞系所共有的特征。通过测定生长曲线,不仅可以了解培养细胞生物学特性的基本参数、测定细胞绝对生长数、判断细胞活力，而且也可用于测定药物等外来因素对细胞生长的影响。本实验采用计数法测定细胞生长曲线，通过连续对细胞计数（通常为10天，一般应每次计数3孔细胞取平均值），然后以存活细胞数对培养时间作图，即得该种细胞的生长曲线。
2.实验材料
①小鼠胚胎成纤维细胞或鸡胚成纤维细胞,DMEM完全培养基。
②24孔板细胞培养板、吸管、吸球，超净工作台、倒置显微镜、细胞计数板。
3.操作步骤
①取生长状态良好的小鼠胎儿成纤维细胞或鸡胚成纤维细胞,用胰酶消化。
②用DMEM制备成细胞悬液。细胞计数后，将细胞浓度调整为(1~5)×104个/mL，精确地将细胞分别接种于两块24孔板中，要求每孔加入的细胞总数一致，加入的培养液量要一致。
③每天取3孔细胞消化，进行细胞计数，计算平均值。一般需连续计数10天左右。从培养起开始，每3天需给未计数的细胞换液。
④以培养时间为横轴，细胞浓度为纵轴，将每天所得的细胞浓度标在坐标纸上，各点连线即得细胞生长曲线。
4.注意事项
① 细胞接种浓度不能过多也不能过少，在合适的浓度下细胞在7~10天内能长满而不发生生长抑制；细胞数量太少，细胞适应期太长；数量太多，细胞将很快进入增值稳定期，在一段时间内需进行传代，曲线不能准确反映细胞生长情况。同种细胞的生长曲线先后测定要采用同一接种密度，这样才能做纵向比较；不同的细胞也要接种细胞数相同，才能进行比较。
② 细胞生长曲线是观察细胞生长基本规律的重要方法。只有具备自身稳定性生长特性的细胞才适合在观察细胞生长变化的实验中应用。因而在细胞系细胞和非建系细胞生长特性观察中，生长曲线的测定是最为基本的指标。
③ 细胞生长曲线虽然最为常用，但有时其反映数值不够精确，有20% ~ 30%的误差，需结合其他指标进行分析。在生长曲线上细胞数量增加1倍时间称为细胞倍增时间，可以从曲线上换算出。细胞倍增的时间区间即为细胞对数生长期，细胞传代、冷冻等实验多应在此区间进行。
④ 细胞在不同培养液中的细胞生长曲线和细胞倍增时间可以直接反映细胞在该种培养液内的增殖速度，是对培养液进行选择的主要依据。通过个同培养液内细胞生长曲线的差异，筛选出对成纤维细胞和上皮细胞最适合的培养液。
⑤通过对细胞生长曲线的绘制，可比较不同的培养液对细胞生长曲线变化的影响。在条件允许的情况下，分析培养液中添加不同的生物活性物质（如生长因子、激素等）对细胞生长的影响，从而筛选出合适的细胞培养液。
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